DRÓB

SEROLOGIA:

KURY:

  • Obecność specyficznych przeciwciał przeciwko Pasteurella multocida PM
  • Obecność przeciwciał przeciwko wirusowi zakaźnego zapalenia oskrzeli kur (badanie akredytowane)  IBV
  • Obecność przeciwciał przeciwko wirusowi zakaźnego zapalenia torby Fabrycjusza IBD (A)
  • Obecność specyficznych przeciwciał przeciwko wirusowi zakaźnego zapalenia krtani i tchawicy ILT
  • Obecność przeciwciał przeciwko Salmonella z grupy D SgD (A)
  • Obecność przeciwciał przeciwko reowirusom REO
  • Obecność przeciwciał przeciwko wirusowi zakaźnego zapalenia torby Fabrycjusza IBD
  • Obecność przeciwciał przeciwko Mycoplasma gallisepticum MG (A)
  • Obecność przeciwciał przeciwko wirusowi syndromu obrzęku głowy SHS (inna nazwa ART)
  • Obecność  przeciwciał przeciwko Adenowirusom gr.1 FAD
  • Obecność specyficznych przeciwciał przeciwko wirusowi zakaźnego zapalenia mózgu i rdzenia kregowego kurcząt AE
  • Obecność specyficznych przeciwciał przeciwko wirusowi syndromu spadku nieśności EDS
  • Obecność przeciwciał przeciwko Salmonella z grupy B SgB (A)
  • Obecność specyficznych przeciwciał przeciwko Astrowirusom     ASO (inna nazwa CastV)
  • Obecność specyficznych przeciwciał przeciwko wirusowi zakaźnego zapalenia krtani i tchawicy ILT
  • Obecność przeciwciał przeciwko wirusowi zakaźnego zapalenia torby Fabrycjusza IBDvp2

INDYKI:

  • Obecność specyficznych przeciwciał przeciwko Mycoplasma meleagridis MM
  • Obecność specyficznych przeciwciał przeciwko Bordetella avium BA
  • Obecność specyficznych przeciwciał przeciwko wirusowi krwotocznego zapalenia jelit indyków HE
  • Obecność specyficznych przeciwciał przeciwko wirusowi influenzy INFA

INDYKI I KURY:

  • Obecność specyficznych przeciwciał przeciwko wirusowi zakaźnego zapalenia mózgu i rdzenia kregowego kurcząt AE
  • Obecność przeciwciał przeciwko wirusowi rzekomego pomoru drobiu NDV
  • Obecność specyficznych przeciwciał przeciwko Mycoplasma synoviae MS
  • Obecność przeciwciał przeciwko Mycoplasma gallisepticum MG
  • Obecność przeciwciał przeciwko reowirusom REO
  • Obecność przeciwciał przeciwko Mycoplasma gallisepticum – synoviae   MGMS
  • Obecność specyficznych przeciwciał przeciwko Ornithobacterium rhinotracheale ORT
  • Obecność przeciwciał przeciwko wirusowi zakaźnego zapalenia nosa i tchawicy indyków (TRT) (inna nazwa MPV)
  • Obecność specyficznych przeciwciał przeciwko wirusowi Białaczki typu J ALV-J
  • Obecność specyficznych przeciwciał przeciwko wirusowi Białaczki typu AB ALVab
  •  Obecność antygenu wirusa Białaczki ALVag
  • Obecność przeciwciał przeciwko Mycoplasma gallisepticum Mgp (A)
  • Obecność przeciwciał przeciwko Mycoplasma synoviaeMSp
  • Obecność przeciwciał przeciwko Mycoplasma meleagridis Mmp
  • Obecność przeciwciał przeciwko Salmonella Gallinarum Pullorum SPGp (A)
  • Obecność przeciwciał przeciwko wirusowi choroby Mareka MD (A)
  • Wykrywanie obecności antygenów toksyn alfa, beta, epsilon, Clostridium perfringens ENT
  • Badanie serologiczne metodą HI w kierunku wariantu M41 wirusa IBV.
  • Badanie serologiczne metodą HI w kierunku wariantu D3128 wirusa IBV.
  • Badanie serologiczne metodą HI w kierunku wariantu D274 wirusa IBV.
  • Badanie serologiczne metodą HI w kierunku wariantu D1466 wirusa IBV.
  • Badanie serologiczne metodą HI w kierunku wariantu D8880 wirusa IBV.
  • Badanie serologiczne metodą HI w kierunku wariantu QX wirusa IBV.
  • Badanie serologiczne metodą HI w kierunku wariantu 4/91 wirusa IBV.
  • Badanie serologiczne metodą HI w kierunku wariantu Italy-02 wirusa IBV.

PCR:

  1. Wykrywanie obecności DNA MSMG metodą real-time PCR (materiał: wymazy ze szczelin podniebiennych, stawów, tchawicy).
  2. Wykrywanie obecności DNA Mg metodą real-time PCR (materiał: wymazy ze szczelin podniebiennych, stawów, tchawicy).
  3. Wykrywanie obecności DNA Ms metodą real-time PCR (materiał: wymazy ze szczelin podniebiennych, stawów, tchawicy).

Badanie w kierunku obecności i identyfikacji Salmonella spp. do celów urzędowych:

Obecność i identyfikacja Salmonella spp.– Metoda hodowlana z potwierdzeniem biochemicznym i serologicznym wg PN-EN-ISO 6579-1:2017-04 Schemat White’a-Kauffmanna -Le Minora:2007 (A).

Mikrobiologia kliniczna:

  • Badanie bakteriologiczne wielokierunkowe (identyfikacja drobnoustrojów metodą MALDI-TOF).
  • Badanie bakteriologiczne ukierunkowane (identyfikacja drobnoustrojów metodą MALDI-TOF).
  • Oznaczenie lekowrażliwości metodą dyfuzyjno-krążkową wg PBM-02 (A).
  • Identyfikacja szczepu bakteryjnego metodą MALDI-TOF.
  • Zabezpieczenie wyizolowanych szczepów bakteryjnych.
  • Badanie w kierunku obecności pałeczek Salmonella.
  • Obecność i identyfikacja Salmonella spp.– Metoda hodowlana z potwierdzeniem biochemicznym i serologicznym wg PN-EN-ISO 6579-1:2017-04 Schemat White’a-Kauffmanna -Le Minora:2007 (A).
  • Badanie mykologiczne.
  • Badanie anatomopatologiczne.

Parazytologia

  • Badanie parazytologiczne (flotacja, zeskrobina z błony śluzowej jelit).
  • Określenie liczby oocyst Eimeria spp. w 1 g kału (OPG).

Mikrobiologia środowiskowa (wymazy czystościowe z obszaru produkcji pierwotnej, ZWD):

  • Obecność i identyfikacja Salmonella spp.– Metoda hodowlana z potwierdzeniem biochemicznym i serologicznym wg PN-EN-ISO 6579-1:2017-04 Schemat White’a-Kauffmanna -Le Minora:2007 (A).
  • Badanie bakteriologiczne – ilościowe (ogólna liczba drobnoustrojów).
  • Badanie bakteriologiczne – jakościowe (obecność drobnoustrojów chorobotwórczych).
  • Badanie bakteriologiczne ukierunkowane.
  • Badanie mykologiczne.
  • Badanie bakteriologiczne próbek z ZWD – wg Instrukcji nr 51 Ministerstwa Rolnictwa- Dep. Wet.
  • Badanie mykologiczne próbek z ZWD – wg Instrukcji nr 51 Ministerstwa Rolnictwa- Dep. Wet.

WODA:

  • Badanie bakteriologiczne wody z linii pojenia.
  • Badanie mykologiczne wody z linii pojenia.

(A) – metoda akredytowana